慢病毒是當前熱門的基因操作工具，其感染譜廣，可有效地感染腫瘤細胞、神經元細胞、心肌細胞、內皮細胞、干細胞等多種類型的細胞，從而為基因功能的研究提供了更強有力的工具。然而仍有一部分細胞，尤其是原代細胞和懸浮細胞由于細胞特性，很難獲得的感染效率。為了提高細胞的感染效率，我們常常選擇多加病毒或使用Polybrene等助感染試劑，然而細胞狀態(tài)卻變差了，且增加感染效率并沒有達到理解的效果，這是什么原因呢？
一、對慢病毒感染出現的問題進行原因分析
1. 細胞狀態(tài)變差——細胞毒性
- 雜質：病毒溶液中殘留的雜質蛋白、內毒素及宿主細胞DNA等是造成細胞毒性的主要因素。特別對于某些外源刺激敏感的細胞來說，嚴重時將導致細胞死亡。這是病毒感染細胞后，狀態(tài)差異的主要原因。
- 過度感染：外源基因過度表達，會導致目的細胞本身正常新陳代謝失衡。這是有些細胞過感會死亡的主要原因。
2. 病毒加了不少，效果不理想，如何增加感染效率——了解影響慢病毒感染效率的因素
- 細胞膜的流動性
- 細胞膜表面受體的表達豐度
- 病毒與細胞的接觸面積和接觸幾率
- 細胞膜與病毒外殼蛋白電荷的多少
二、如何有針對性地增加慢病毒感染效率
了解了影響細胞狀態(tài)和感染效率的原因后，我們就可以有針對性的進行調整。吉凱基因從大量的文獻及實際操作中總結了增加感染效率的方法，可根據不同的實驗需求選擇性的使用：
1. 使用高滴度高純度的慢病毒，可以減少病毒中的雜質對細胞狀態(tài)的影響：降低慢病毒對細胞的毒性
2. 調整細胞狀態(tài)，感染時使用對數期的細胞：增加細胞膜的流動性
3. 降低感染時血清濃度，使用無血清/低血清的培養(yǎng)基：降低血清蛋白對病毒外殼蛋白的封閉
4. 離心法，感染時將細胞培養(yǎng)板密封，用平角轉子離心機1000g離心1h，再放回培養(yǎng)箱中正常培養(yǎng)：增加慢病毒與細胞的接觸幾率，但對細胞有一定的機械損傷，儀器要求高
5. 感染時加入Rentronectin等纖粘蛋白：增加慢病毒與細胞接觸幾率，但會影響細胞的貼壁狀態(tài)
6. 使用傳統的助感染試劑，如Polybrene：中和細胞膜和病毒粒子之間的電荷排斥，但Polybrene本身就具有細胞毒性，部分細胞對Polybrene敏感，容易導致細胞狀態(tài)變差、形態(tài)發(fā)生變化、甚至死亡。
7. 使用相比Polybrene，可顯著提高細胞感染效率，且對細胞毒性極低，更適合敏感細胞使用
三、特殊細胞慢病毒感染注意事項
1. 懸浮細胞
對于懸浮細胞，可采用離心感染方法提高感染效率。如將細胞培養(yǎng)板密封后，用平角轉子離心機1000g離心1h，再放回培養(yǎng)箱中正常培養(yǎng)。
2. 極難感染的細胞
對于極難感染的細胞，可采用多次感染的方法，即感染一次后，重新加入新鮮病毒再次感染，可顯著提升感染效率。但需要注意調整兩次感染間細胞狀態(tài)。
3. 傳代能力較差的原代細胞、非分裂細胞
原代細胞：由于細胞增長緩慢，可以在接種時提高匯合度到50%～60%，確保在感染后4天時細胞匯合度達到90%～100%；
非分裂細胞：如神經元細胞，接種后不再增殖，需要按照100%的匯合度進行接種。
